Leica Microsystems TCS-SP2 / Leica TCS-SP2

Con seis líneas de láser en el espectro visible (458, 476, 488, 514, 561 y 633 nm) y dos líneas en el de ultravioleta (351, 364 nm). Tres canales de detección internos de ancho de banda y longitud de onda ajustables y un detector externo de iluminación transmitida para imágenes de campo claro. Objetivos disponibles: 5X/0.15, 10X/0.4, 20X/0.7 OIL, 40X/1.25-0.75 OIL, 63X/1.4-0.6 OIL, 100X1.4-0.7 OIL. Platina motorizada, con posibilidad de montaje de cámara termostatizada con CO2 para experimentos in vivo Posibilidad de: zoom electronico, rotación del haz de barrido, Adquisición de imágenes multidimensionales hasta 8D: x,y,z,t,α,λ,i,d (área imagen, altura, tiempo, rotación, longitud de onda, intensidad, situación en xy o tile scan) Estudios espectrales de cálculo de emisión de un fluorocromo o autofluorescencia desconocida, eliminación del cruce entre fluorocromos con emisión solapante.

• Análisis tridimensional de muestras biológicas:
inmunofluorescencia en células, tejidos, organismos completos de cierto
tamaño, biofilms, etc. Con posibilidad de trabajar las secciones ópticas
tanto horizontal (xyz) como verticalmente (xzy).
• Estudios de
colocalización de hasta cinco marcadores que emitan en el rango del
ultravioleta, visible e infrarrojo. Así como de internalización y
tránsito intracelular.
• Análisis de expresión génica, interacción molecular y otros procesos celulares.
• Hibridación in situ con sondas fluorescentes (FISH).
• Experimentos
in vivo y a tiempo real mediante marcadores o proteínas de fusión
fluorescentes (como por ejemplo, la GFP): Time-lapse, medida de iones
intracelulares (análisis fisiológico de Ca2+), estudios en 4D.
• Reconstrucción
automática de grandes estructuras a partir de software (experimentos de
Tile scan), ya que ambos equipos disponen de platina motorizada (tanto
para experimentos in vivo, como para muestras fijadas).
• Estudios
de adquisición simultánea o secuencial de diferentes zonas de la misma
muestra o distintos pocillos de una misma preparación en 2D, 3D y 4D
(experimentos de Mark and Find y Time-lapse).
• Estudios de lambda
scan para la detección espectral lo que permite obtener: las curvas de
autofluorescencia de diferentes muestras, los espectros de emisión de
los fluoróforos, si se desconocen y, eliminar o minimizar problemas de
solapamiento de espectros.
• Estudio de interacciones entre
proteínas mediante la técnica FRET (Fluorescence Resonance Energy
Transfer). Modos: Acceptor Photobleaching y Sensitized Emission.
• Estudio
de transporte de proteínas mediante la técnica FRAP (Fluorescence
Recovery After Photo-bleaching) y sus variantes: iFRAP (Inverse), FLIP
(Fluorescence Loss in Photobleaching).
• Captación de imágenes con contraste de fase.
• En
determinados materiales permite la obtención de imágenes de su
superficie mediante reflexión y posterior análisis de superficies,
rugosidad, etc.