Description
Objetivo del curso: dar a conocer los fundamentos de la microscopía óptica y electrónica de transmisión y las bases teóricas y prácticas de la preparación de muestras biológicas, con el objeto de optimizar la obtención de imágenes a partir de estas muestras, así como aprender a analizar y presentar los resultados obtenidos.
Sede del curso: Unidad de Microscopía - Instituto de Investigación M. de Valdecilla- IDIVAL.
PROGRAMA
Jornada I. 23 de Octubre 2017.
Sesión 1 (16:00-17:00)
Teoría
Importancia de la microscopia en biomedicina. Tipos y Aplicaciones de la microscopía. Componentes del microscopio óptico
Monica López Fanarraga
Sesion2 (17:00-18:00)
Teoría
Preparación de muestras para microscopía óptica de fluorescencia (procariota, eucariota y tejido). Tipos de fijadores. Protocolos de inmunofluorescencia.
Monica López Fanarraga
Sesión 3 (18:00-20:00)
Práctica
Preparación de muestras I
Bacterias, Eucariotas en suspensión I, Tejido I
Fidel Madrazo Toca
Jornada II. 24 de Octubre 2017
Sesión 1 (16:00-17:00)
Teoría
Principios de la fluorescencia. Excitación/Emisión, Fluoroforos, Sistemas de ex/em, filtros, etc.
Bases de la Inmunocitoquímica
Iñigo Casafont
Sesión 2 (17:00-18:00)
Teoría
Marcajes fluorescentes; fijado y en vivo, tipos
Iñigo Casafont
Sesión 3 (18:00-20:00)
Práctica
Preparación de muestras II
Eucariotas adherentes, Eucariotas en suspensión II, Tejido II
Fidel Madrazo Toca
Jornada III. 25 de Octubre 2017
Sesión 1 (16:00-17:00)
Teoría
Fundamentos y aplicaciones de la microscopia electrónica de trasmisión (TEM) y de barrido (SEM) en biomedicina.
Fundamentos y bases de la preparación de muestras biológicas para la microscopia electrónica de transmisión y de barrido
Miguel Angel Lafarga Coscojuela
Sesión 2 (17:00-18:00)
Práctica
Preparación de muestras y DEMO de Microscopía Electrónica de Barrido (SEM).
Jose Manuel Icardo de la Escalera
Sesión 3 (18:00-20:00)
Práctica
Preparación de muestras para TEM. Fijación e inclusión de las muestras biológicas, obtención de secciones semifinas y ultrafinas con el ultramicrotomo y tinción y contraste de las secciones. Observación de muestras.
Raquel Silvia Garcia Ceballos
Jornada IV. 26 de Octubre 2017
Sesión 1 (16:00-18:00)
Teoría/Práctica
Cultivos celulares. Buenas prácticas. Tipos, necesidades, contaminaciones, soportes, etc.
Jose Ramos Vivas
Sesión 2 (18:00-20:00)
Teoría/Práctica
-Presentación de buscadores, bases de datos y simuladores por internet
-Programas de simulación de espectros y de inmunosfluorescencias
-Presentación de resultados con el ImageJ (montajes de imágenes, leyendas, análisis básico)
Fidel Madrazo Toca
Jornada V. 27 de Octubre 2017
Sesión 1 (16:00-17:30)
Teoría
-Que microscopia utilizar. Limitaciones
-Soportes aptos para microscopia
-Célula viva vs célula fijada. Problemas necesidades
Fidel Madrazo Toca
Sesión 2 (17:30-19:30)
Práctica
-Observación de las muestras preparadas durante el curso por microscopia confocal y epifluorescencia. Ventajas e inconvenientes
-Práctica Time lapse. Conceptos. Aplicaciones
Fidel Madrazo Toca
Realización de evaluación (19:30-20:00)
Dirigido a: licenciados y
técnicos en ciencias de la salud y personal investigador pre y
post-doctoral.
Fechas: Del 23 al 27 de octubre
Horario: Lunes a jueves de 16:00 a 20:00 horas
Duración: 20 horas.
Acreditación: 4,3 créditos de formación continuada (Exp. Nº:4.152-140/17)
Metodología: Teórico - práctico.
Número de plazas: 14 alumnos.
Plazo de inscripciones: 2 al 18 de octubre
Precio matrícula: 120 euros
Preinscripción online, sin ningún compromiso. Al
enviar tu preinscripción, te confirmaremos si hay plazas disponibles y te
enviaremos instrucciones para formalizar la matrícula.
Información:
Mail: microscopia2@idival.org
Tfno.: 942 315515 – Ext 73219