Objetivo del curso:  dar a conocer los fundamentos de la microscopía óptica y electrónica de transmisión y las bases teóricas y prácticas de la preparación de muestras biológicas, con el objeto de optimizar la obtención de imágenes a partir de estas muestras,  así como aprender a analizar y presentar los resultados obtenidos.

  Sede del curso: Unidad de Microscopía - Instituto de Investigación M. de Valdecilla- IDIVAL. 

PROGRAMA

 

Jornada I. 23 de Octubre 2017.      

Sesión 1 (16:00-17:00)

Teoría

Importancia de la microscopia en biomedicina. Tipos y Aplicaciones de la microscopía. Componentes del microscopio óptico

Monica López Fanarraga

Sesion2 (17:00-18:00)

Teoría

Preparación de muestras para microscopía óptica de fluorescencia (procariota, eucariota y tejido). Tipos de fijadores. Protocolos de inmunofluorescencia.

Monica López Fanarraga

Sesión 3 (18:00-20:00)

Práctica

Preparación de muestras I

Bacterias, Eucariotas en suspensión I, Tejido I

Fidel Madrazo Toca

 

Jornada II. 24 de Octubre 2017      

Sesión 1 (16:00-17:00)

Teoría

Principios de la fluorescencia. Excitación/Emisión, Fluoroforos, Sistemas de ex/em, filtros, etc.

Bases de la Inmunocitoquímica

Iñigo Casafont

Sesión  2 (17:00-18:00)

Teoría

Marcajes fluorescentes; fijado y en vivo, tipos       

Iñigo Casafont

Sesión 3 (18:00-20:00)

Práctica

Preparación de muestras II

Eucariotas adherentes, Eucariotas en suspensión II, Tejido II

Fidel Madrazo Toca

 

Jornada III. 25 de Octubre 2017     

Sesión 1 (16:00-17:00)

Teoría

Fundamentos y aplicaciones de la microscopia electrónica de trasmisión (TEM) y de barrido (SEM) en biomedicina.

Fundamentos y bases de la preparación de muestras biológicas para la microscopia electrónica de transmisión y de barrido

Miguel Angel Lafarga Coscojuela

Sesión 2 (17:00-18:00)

Práctica

Preparación de muestras y DEMO de Microscopía Electrónica de Barrido (SEM).

Jose Manuel Icardo de la Escalera

Sesión 3 (18:00-20:00)

Práctica

Preparación de muestras para TEM. Fijación e inclusión de las muestras biológicas, obtención de secciones semifinas y ultrafinas con el ultramicrotomo y tinción y contraste de las secciones. Observación de muestras.

Raquel Silvia Garcia Ceballos

 

Jornada IV. 26 de Octubre 2017     

Sesión 1 (16:00-18:00)

Teoría/Práctica

Cultivos celulares. Buenas prácticas. Tipos, necesidades, contaminaciones, soportes, etc.

Jose Ramos Vivas

Sesión 2 (18:00-20:00)

Teoría/Práctica

-Presentación de buscadores, bases de datos y simuladores por internet

-Programas de simulación de espectros y de inmunosfluorescencias

-Presentación de resultados con el ImageJ  (montajes de imágenes, leyendas, análisis básico)

Fidel Madrazo Toca

 

Jornada V. 27 de Octubre 2017      

Sesión 1 (16:00-17:30)

Teoría

-Que microscopia utilizar. Limitaciones

-Soportes  aptos para microscopia

-Célula viva vs célula fijada. Problemas necesidades

Fidel Madrazo Toca

Sesión 2 (17:30-19:30)

Práctica

-Observación de las muestras preparadas durante el curso por microscopia confocal y epifluorescencia. Ventajas e inconvenientes

-Práctica Time lapse. Conceptos. Aplicaciones       

Fidel Madrazo Toca

 

Realización de  evaluación   (19:30-20:00)

Dirigido a: licenciados y técnicos en ciencias de la salud y personal investigador pre y post-doctoral. 

Fechas: Del 23 al 27 de octubre                                                                
Horario: Lunes a jueves de 16:00 a 20:00 horas
Duración: 20 horas.  

Acreditación: 4,3 créditos  de formación continuada (Exp. Nº:4.152-140/17)

Metodología: Teórico - práctico.

Número de plazas: 14 alumnos.

Plazo de inscripciones:  2 al 18 de octubre

Precio matrícula: 120 euros

Preinscripción online, sin ningún compromiso. Al enviar tu preinscripción, te confirmaremos si hay plazas disponibles y te enviaremos instrucciones para formalizar la matrícula. 

Información: 
Mail: microscopia2@idival.org

Tfno.: 942 315515 – Ext 73219