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Fidel Madrazo |
Jornada I. 23 de noviembre de 2015
Sesión 1 (16:00-17:00)
Teoría
Importancia de la microscopia en biomedicina. Tipos y Aplicaciones de la microscopía. Componentes del microscopio óptico
Sesion2 (17:00-18:00)
Teoría
Preparación de muestras para microscopía óptica de fluorescencia (procariota, eucariota y tejido). Tipos de fijadores. Protocolos de inmunofluorescencia.
Sesión 3 (18:00-20:00)
Práctica
Preparación de muestras I
Bacterias, Eucariotas en suspensión I, Tejido I
Jornada II. 24 de noviembre de 2015
Sesión 1 (16:00-17:00)
Teoría
Principios de la fluorescencia. Excitación/Emisión, Fluoroforos, Sistemas de ex/em, filtros, etc.
Bases de la Inmunocitoquímica
Sesión 2 (17:00-18:00)
Teoría
Marcajes fluorescentes; fijado y en vivo, tipos
Sesión 3 (18:00-20:00)
Práctica
Preparación de muestras II
Eucariotas adherentes, Eucariotas en suspensión II, Tejido II
Jornada III. 25 de noviembre de 2015
Sesión 1 (16:00-17:00)
Teoría
Fundamentos y aplicaciones de la microscopia electrónica de trasmisión (TEM) y de barrido (SEM) en biomedicina.Fundamentos y bases de la preparación de muestras biológicas para la microscopia electrónica de transmisión y de barrido
Sesión 2 (17:00-18:00)
Práctica
Preparación de muestras y DEMO de Microscopía Electrónica de Barrido (SEM).
Sesión 3 (18:00-20:00)
Práctica
Preparación de muestras para TEM. Fijación e inclusión de las muestras biológicas, obtención de secciones semifinas y ultrafinas con el ultramicrotomo y tinción y contraste de las secciones. Observación de muestras.
Jornada IV. 26 de noviembre de 2015
Sesión 1 (16:00-18:00)
Teoría
Cultivos celulares. Buenas prácticas. Tipos, necesidades, contaminaciones, soportes, etc.
Sesión 2 (18:00-20:00)
Teoría/Práctica
-Presentación de buscadores, bases de datos y simuladores por internet
-Programas de simulación de espectros y de inmunosfluorescencias
-Presentación de resultados con el ImageJ (montajes de imágenes, leyendas, análisis básico)
Jornada V. 27 de noviembre de 2015
Sesión 1 (16:00-17:30)
Teoría
-Que microscopia utilizar. Limitaciones
-Soportes aptos para microscopia
-Célula viva vs célula fijada. Problemas necesidades
Sesión 2 (17:30-19:30)
Práctica
-Observación de las muestras preparadas durante el curso por microscopia confocal y epifluorescencia. Ventajas e inconvenientes
-Práctica Time lapse. Conceptos. Aplicaciones
Realización de evaluación (19:30-20:00)
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